手持式藻类荧光测量仪（探头式）

 AYP-C100手持式藻类荧光测量仪（探头式）是一款用于快速、测量水体叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。它配备了浸入式光学探头，可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量。AquaPen 具备*的敏感度，可检测0.5μg Chl/L的叶绿素荧光，可以检测浮游植物浓度极低的自然水体，可用于野外和实验室测量。

AYP-C100手持式叶绿素荧光测量仪采用调试式荧光测量技术，可设置多种参数，方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧，方便携带，设计新颖，操作简单，经济耐用，精度高稳定性好。

应用领域

 适用于光合作用研究和教学，植物及分子生物学研究，农业、林业，生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。

· 植物光合特性和代谢紊乱筛

· 生物和非生物胁迫的检测

· 植物抗胁迫能力或者易感性研究

· 代谢混乱研究

· 长势与产量评估

· 植物——微生物交互作用研究

· 植物——原生动物交互作用研究

典型样品

· 地表结皮

· 地衣、苔藓

· 表层水体藻类

· 其它

功能特点：

• 结构紧凑、便携性强，LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内，重量仅180g
• 功能强大，是叶绿素荧光技术的结晶产品，具备了大型荧光仪的所有功能，可以测量所有叶绿素荧光参数
• 内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序，包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP–test等
• 高时间分辨率，可达10万次每秒，自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数
• 探头可直接插入水体中测量，简便快捷
• 可配备GPS模块，输出待时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表
• FluorPen软件功能强大，可下载、展示叶绿素荧光参数图表，还可实现遥控功能
• 配置灵活，可选配蓝牙通讯或USB通讯
• 可选配野外自动监测式FluorPen，防水防尘设计

工作原理

利用调制式荧光测量技术，采用LED光源，选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。

实验过程和测量参数

· Ft：瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft＝Fo

· QY：光量子效率，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv’/Fm’ (光适应完成的样品)

· OJIP：叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。

· NPQ：非光化学淬灭，表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。

· 光曲线：Qy对不同光强的适应曲线。

· 可选配GPS模块

技术参数

• 测量参数包括F₀、Ft、Fm、Fm’、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶绿素荧光参数，及3种给光程序的光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等
• OJIP–test时间分辨率为10µs（每秒10万次），给出OJIP曲线和26个参数，包括F₀、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F₀、Fv/F₀、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
• 3种给光程序光响应曲线，20多个叶绿素荧光参数
• 2种荧光淬灭曲线，20多个参数
• 测量光：0–0.03µmol(photons)/m².s可调
• 光化学光：0–1000µmol(photons)/m².s可调
• 饱和光：0–3000µmol(photons)/m².s可调
• 光源：标准配置蓝光455nm，可根据需求配备红光或白光
• 叶绿素荧光检测限：0.5μg Chl/L

· 波长检测范围：697nm-750nm

· BOIS：可升级

· 通讯：USB或蓝牙

· 存储：4M

· 数据存储：100,000个

· 显示：2 x 8字符黑白液晶屏

· 键盘：密封防水设计2键

· 自动关机：5分钟无操作

· 电源：4 AAA碱性电池或充电电池

· 电池寿命：持续测量70 h

· 低电报警

· 尺寸：120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"

· 重量：180 g, 6.5 oz

· 操作条件：温度：0 ～ 55 ºC；相对湿度：0 ～ 95 %非冷凝

· 存储条件：温度：-10 ～ +60 ºC；相对湿度：0 ～ 95 %非冷凝

· 软件：FluorPen2.0，适用于Windows 2000、XP、7，实时显示和遥控，植入GPS绘图，EXCEL输出

操作软件与实验结果

产地: 欧洲

参考文献

Piovar J. et al. (2010): Plant Growth Regulation doi:10.1007/s10725-010-9515-4.

Vandamme D. et al. (2010): : Journal of Applied Phycology 22:525-530.

Gao Q.T. and Tam N.F.Y. (2010): Chemosphere doi:10.1016.

Kviderova J. (2010): Environmental Toxicology doi:10.1002.

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附：OJIP参数及计算公式

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)