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手持式藻类荧光测量仪(探头式)

更新时间:2020-06-24      点击次数:1695

 

 AYP-C100手持式藻类荧光测量仪(探头式)是一款用于快速、测量水体叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。它配备了浸入式光学探头,可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量。AquaPen 具备*的敏感度,可检测0.5μg Chl/L的叶绿素荧光,可以检测浮游植物浓度极低的自然水体,可用于野外和实验室测量。

AYP-C100手持式叶绿素荧光测量仪采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。

应用领域

 适用于光合作用研究和教学,植物及分子生物学研究,农业、林业,生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。

· 植物光合特性和代谢紊乱筛

· 生物和非生物胁迫的检测

· 植物抗胁迫能力或者易感性研究

· 代谢混乱研究

· 长势与产量评估

· 植物——微生物交互作用研究

· 植物——原生动物交互作用研究

典型样品

· 地表结皮

· 地衣、苔藓

· 表层水体藻类

· 其它

功能特点:

工作原理

利用调制式荧光测量技术,采用LED光源,选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。

实验过程和测量参数

· Ft:瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后FtFo

· QY:光量子效率,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)Fv’/Fm’ (光适应完成的样品)

· OJIP:叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。

· NPQ:非光化学淬灭,表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。

· 光曲线Qy对不同光强的适应曲线。

· 可选配GPS模块

技术参数

· 波长检测范围:697nm-750nm

· BOIS:可升级

· 通讯:USB或蓝牙

· 存储:4M

· 数据存储:100,000

· 显示:2 x 8字符黑白液晶屏

· 键盘:密封防水设计2

· 自动关机:5分钟无操作

· 电源:4 AAA碱性电池或充电电池

· 电池寿命:持续测量70 h

· 低电报警

· 尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"

· 重量:180 g, 6.5 oz

· 操作条件:温度:0  55 ºC;相对湿度:0  95 %非冷凝

· 存储条件:温度:-10  +60 ºC;相对湿度:0  95 %非冷凝

· 软件:FluorPen2.0,适用于Windows 2000XP7,实时显示和遥控,植入GPS绘图,EXCEL输出

 

操作软件与实验结果

 

产地: 欧洲

参考文献

Piovar J. et al. (2010): Plant Growth Regulation doi:10.1007/s10725-010-9515-4.

Vandamme D. et al. (2010): : Journal of Applied Phycology 22:525-530.

Gao Q.T. and Tam N.F.Y. (2010): Chemosphere doi:10.1016.

Kviderova J. (2010): Environmental Toxicology doi:10.1002.

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附:OJIP参数及计算公式

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

 

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